MODELING BIOCHEMICAL CONDITIONS OF THE INTRAORGAN MEDIUM IN TYPE-2 SPINAL MUSCULAR ATROPHY IN THE ORGANOTYPIC TISSUE CULTURE

Modelling biochemical conditions of the intraorgan medium in type-2 spinal muscular atrophy in the organotypic tissue culture allowed us to detect the inhibiting effect on the growth of axons of sensory ganglia in 10-12-day chicken embryos. It is shown that the degree of growth inhibition of axons of spinal ganglia in chicken embryos correlates with the parameters of neurotrophin concentration in the blood serum of patient with type-2 spinal muscle atrophy (SMA). Neurotrophins hyperexpression inhibits the growth of the axon. That effect may be seen as a factor promoting further neurodegeneration in the nervous tissue.

спинальная мышечная атрофия 2 типа, сыворотка крови, органотипическая культура ткани, фактор роста головного мозга (ФРГМ), цилиарный нейротрофический фактор (ЦНФ), каспаза-8, тамоксифен, нейрит-ингибирующий эффект, spinal muscle atrophy of type 2 (SMA), blood serum, organotypic culture, brain derived neurotrophic factor (BDNF), ciliary neurotrophic factor (CNTF), tamoxifen, caspase 8, neurite-inhibitory effect

1. Влияние оуабаина на рост нейритов чувствительных нейронов в органотипической культуре ткани / В.А. Пеннияйнен и др. // Цитология. 2003. Т. 45 (№ 5). С. 377-379.

2. Клетки / Под ред. Б. Льюин и др. М.: БИНОМ, 2010. 951с.

3. Морфологические основы патологии / Под ред. В.П. Волков. Новосибирск.: СибАК, 2015. 176 с.

4. Неврология: национальное руководство / Под ред. Е.И. Гусева. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. 936 с.

5. Нейропротекция: модели, механизмы, терапия / Под ред. М. Бэра. М.: БИНОМ, 2013. 429 с.

6. Оценка реиннервационного процесса у больных спинальной мышечной атрофией 2 типа в комплексном клинико-экспериментальном исследовании / М.Г. Соколова и др. // Вестник Северо-Западного государственного медицинского университета им. И.И. Мечникова. 2014. Т. 6 (№ 4). С. 45-52.

7. Фрешни Р. Культура животных клеток: практическое руководство. М.: БИНОМ, 2010. 691 с.

8. Уилсон К., Уолкер Дж. Принципы и методы биохимии и молекулярной биологии. М.: БИНОМ, 2014. 848 с.

9. Черкасова Е.И., Брилкина А.А. Работа с культурами клеток. Нижний Новгород: Изд-во Нижегородского университета, 2015. 57 с.

10. Acute exercise modulates BDNF and pro-BDNF protein content in immune cells / A. Brunel-li et al. // Medicine and science in sports and exercise. 2012. Vol. 44 (№ 10). P. 1871-1877.

11. Ciliary neurotrophic factor is required for motoneuron sprouting / S. Siegel et al. // Exp. Neurol. 2000. Vol. 166. P. 205-212.

12. Huang E.J., Reichardt L.F. Neurotrophins: Roles in neuronal development and function // Annu. Rev. Neurosci. 2001. Vol. 24. Р. 677-736.

13. Levi-Montalchini R. The nerve growth factor: thirty-five years later (Nobel lecture, Dec. 8, 1986) // Nobel Lectures: Physiology or Medicine, 1981-1990 / Ed. Jan Lindsten. Singapore: World Scientific Publishing Co., 1993. P. 349-369.

14. Nerve growth factor, brain-derived neurotrophic factor, neurotrophin-3 and glial-derived neurotrophic factor enhance angiogenesis in a tissue-engineered in vitro model / М. Blais et al. // Tissue Engineering: Part A. 2013. Vol. 19 (Iss. 15-16). Р. 1655-1664.

15. Role of BDNF in central motor structures and motor diseases / Y.Y. He et al. // Mol. Neuro-biol. 2013. Vol. 48 (№ 3). P. 83-93.