Оценка применимости искусственных почвогрунтов для выращивания растений

Цель. Оценка применимости искусственных почвогрунтов для выращивания лекарственных растений.
Процедура и методы. Для выявления применимости почвогрунтов при выращивании лекарственных растений изучались: всхожесть посадочного материала, вегетация, а также биохимические параметры выращенных растений. В качестве субстратов изучены коммерческие почвогрунты: «Grunt ECO», смесь торфяная «Veltorf», почвогрунт для проращивания семян «Substrates Select», в качестве контроля взята нативная почва полевого севооборота, а в качестве индикаторного вида растений – кресс-салат. Основные исследования проведены на различных культурах лекарственных растений.
Результаты. Показаны удовлетворительные результаты при выращивании лекарственных растений, а также кресс-салата, на почвогрунтах «Grunt ECO» и «Substrates Selec». При оценке фитоприменимости торфяного почвогрунта «Veltorf» отмечена гибель большого количества исследуемых растений.
Теоретическая и/или практическая значимость. Изученные почвогрунты являются продуктами промышленной биотехнологической переработки отходов, что определяет целесообразность расширения областей их использования. В настоящем исследовании определена возможность применения почвогрунтов в сравнении с нативной почвой полевого севооборота для выращивания лекарственных растений. Поскольку состав и свойства почвогрунтов существенно зависят от исходных компонентов и технологии ферментирования, то их фитоприменимость для разных целей должна изучаться.

1. Активность каталазы травянистых растений в условиях загрязнения городской среды / А. С. Петухов, Н. А. Хритохин, Т. А. кремлева, Г. А. Петухова // Самарский научный вестник. 2019. Т. 8. № 1. C. 90–95.

2. Бухарина И. Л., Журавлёва А. Н., Болышова О. Г. Городские насаждения: экологический аспект. Ижевск: Удмуртский университет, 2012. 206 с.

3. Дылис Н. В. Программа и методика биогеоценологических исследований. М.: Наука, 1974. 404 с.

4. Колесниченко В. В., Колесниченко А. В. Изучение влияния высокой концентрации кадмия на функционирование антиоксидантных систем этиолированных проростков пшеницы разной длины // Journal of Stress Physiology and Biochemistry. 2011. Vol. 7. № 3. P. 212–221.

5. Кубрина Л. В., Супиниченко Е. А. Использование кресс-салата как тест-объекта для оценки загрязнения снежного покрова // Научное обозрение (биология). 2021. № 1. С. 12–15.

6. Кунина В. А., Белоус О. Г. Состояние фотосинтетических пигментов листьев древесных растений в условиях городской среды // Учёные записки Крымского федерального университета имени В. И. Вернадского. Биология. Химия. 2020. Т. 6. № 2. С. 108–118.

7. Литвинов С. С. Методика полевого опыта в овощеводстве. М.: Всероссийский научно-исследовательский институт овощеводства, 2011. 650 с.

8. Максимова Е. В., Косицына А. А., Макурина О. Н. Влияние антропогенных факторов химической природы на некоторые эколого-биохимические характеристики растений // Вестник Самарского государственного университета. Естественнонаучная серия. 2007. № 8. С. 146–152.

9. Оценка качества почвогрунтов и их компонентов по показателям содержания неорганических веществ / А. С. Чепрасова, М. А. Севостьянов, Н. Г. Новикова, А. А. Колкова, А. В. Маршева, Д. Б. Петренко, Н. В. Васильев //Агрохимический вестник. 2023. № 3. С. 70–74.

10. Пендюрин Е. А., Святченко А. В., Кирюшина Н. Ю. Способ восстановления нарушенных территорий // Вектор ГеоНаук. 2022. № 1. С. 83–89.

11. Почвогрунт: обзор методов получения и возможностей применения / А. П. Глинушкин, Л. Л. Свиридова, М. А. Севостьянов, И. И. Сычева, Е. В. Гришина // Биотика. 2018. № 6. С. 10–19.

12. Acid phosphatase activity in phosphorus-deficient white lupin roots / G. A. Gilbert, J. D. Knight, C. P. Vance, D. L. Allan // Plant, Cell and Environment. 1999. Vol. 22. P. 801–810.

13. A reappraisal of the use of DMSO for the extraction and determination of chlorophylls a and b in lichens and higher plants / J. D. Barnes, L. Balaguer, E. Manrique, S. Elvira, A. W. Davison // Environmental and Experimental Botany. 1992. № 32. Р. 85–100.

14. Biochemical and antioxidant proprieties associated with the adaptation of faba bean (Vicia faba L.) – rhizobia symbiosis to phosphorus deficit / M. Mouradi, M. Farissi, A. Khadraji, B. Makoudi, C. Ghoulam // Journal of Materials and Environmental Science. 2018. № 9. Р. 1574–1581.

15. Heinonen J. K., Lahti R. A. A new and convenient colorimetric determination to the assay of inorganic pyrophosphatase // Analytical Biochemistry. 1981. Vol. 113. № 2. P. 313–317.

16. Protein measurement with the Fοlin Phenol Reagent / O. H. Lοwry, N. J. Rοsenbrought, A. L. Farr, R. L. Rangal // Journal of Biological Chemistry. 1951. Vol. 193. № 2. P. 265–275.

17. Sinha A. K. Colorimetric assay of catalase // Analytical Biochemistry. 1972. № 47. P. 389–394.

18. Żebrowska E., Bujnowska E., Ciereszko I. Differential responses of oat cultivars to phosphate deprivation: plant growth and acid phosphatase activities // Acta Physiologiae Plantarum. 2011. Vol. 34. P. 1251–1260.