Изменения структуры ядра эритроцитов периферической крови промысловых Рыбволго- Каспийского канала
Аннотация
встречаемости эритроцитов периферической крови с
отклонениями в структуре ядра промысловых видов
рыб Волго-Каспийского канала. Цитопатологичес-
кие изменения структуры ядра рассматриваются как
следствие развития дегенеративных процессов в ор-
ганизме, обусловленных комплексным воздействием
экзогенных и эндогенных факторов. Уровень цитопато-
логических изменений структуры ядра может служить
индикатором состояния организма рыб, его адаптаци-
онных возможностей.
Список литературы
1. Аббасова А.Р., Палатников Г.М. Генотоксическое состояние популяции воблы Rutilus rutilus caspicus на юге побережья Апшерона // Материалы первой международной научно-практической конференции молодых ученых Комплексные исследования биологических ресурсов южных морей и рек. Астрахань, 2004. С. 11-13.
2. Давыдов О.Н. Патология крови рыб. Фирма ИНКОС, 2006. 206 с.
3. Житенева Л.Д., Полтавцева Т.Г., Рудницкая О.А. Атлас нормальных и патологически измененных клеток крови рыб. Ростов-на-Дону, 1989. 112 с.
4. Журавлева, Г.Ф. Морфофункциональные основы адаптивной модификации осетровых при эндоэкологическом токсикозе // Успехи современного естествознания. 2003. № 3. С. 68.
5. Изюмов Ю.Г., Таликина М.Г., Чеботарева Ю.В. Количество микроядер в эритроцитах периферической крови плотвы Rutilus rutilus и леща Abramis brama Рыбинского и Горьковского водохранилищ // Биология внутренних вод. 2003. № 1. С. 98-101.
6. Ильин Д.А. Аспекты формирования микроядер (обзор литературы) // Естествознание и гуманизм: сб. науч. работ. Томск, 2005. Т. 3. № 4. С. 20-22.
7. Ильинских Н.Н., Козлова С.А., Ильинских И.Н., Ильинских Е.Н., Юркин А.Ю. Морфологические изменения эритроцитов крови людей, проживающих на территориях геохимической провинции с месторождениями кадмия // Современный мир, природа и человек. Сборник научных трудов. Томск, 2009. Т.1. № 2. С.25-30.
8. Ильинских Н.Н., Новицкий В.В., Ванчугова Н.Н., Ильинских И.Н. Микроядерный анализ и цитогенетическая нестабильность. Томск: Изд-во Том. ун-та, 1992. 272 с.
9. Катунин Д.Н., Егоров С.Н. Исследовать гидролого-гидрохимические и эколого-токсикологические условия формирования рыбных запасов в низовьях р. Волги и Каспийском море // Отчет о НИР (годовой): КаспНИРХ. Астрахань, 2009. С.121-135.
10. Кладис Е.Ю., Галкина О.А. Использование аномалий ядер эритроцитов рыб для тестирования экологической ситуации в прибрежной зоне Черного моря // Вопросы рыболовства. 2002. № 1. С. 165-167.
11. Конченко Д.С. Морфология клеток крови при патологических процессах // Вестник Росс-го гос. мед. ун-та им. Н.И. Пирогова. 2010. Спец. вып. № 2. С.501.
12. Методические указания по проведению гема- тологического обследования рыб / Министерс- тво сельского хозяйства и продовольствия РФ, Департамент ветеренарии № 13-4-2/1487 от 02.02.1999 г.
13. Моисеенко Т.И., Гашкина Т.И., Шарова Ю.Н., Покосва А. Г. Экотоксикологическая оценка последствий загрязнения вод р. Волга. // Водные ресурсы. 2005. № 4. С.410-424.
14. Молдавская А.А., Журавлева Г.Ф., Врочинский К.К., Федорова Н.Н., Теплый Д.Л., Земков Г.В. Морфофункциональные аспекты появления токсикоза у рыб (экспериментальные и натуральные наблюдения). Астрахань, 2003. 182 с.
15. Ригер Р., Михаэлис А. Генетический и цитогенетический словарь / Пер. с нем. М.: Колос 1967. 607 с.
16. Роскин Г.И., Левинсон Л.Б. Микроскопическая техника. М. 1957. 468 с.
17. Озернюк Н.Д., Нечаев С.К. Анализ механизмов эволюционных процессов // Изв. РАН. Сер. Биол. 2002. № 4. С.457-462.
18. Шиффман Ф. Дж. Патофизиология крови / Пер. с анг. М. -СПб.: Изд-во БИНОМ - Невский Диалект, 2001. 448 с.
19. Эколого-гематологические характеристики некоторых видов рыб: Справочник / Сост. Л.Д. Житенева, О.А. Рудницкая, Т.И. Калюжная. Ростов-на-Дону : Изд-во Молот, 1997. 152 с.
20. Hooft man R. N., Raat de W. K. Induction of nuclear anomalies (micronuclei) in the peripheral blood erythrocytes of the eastern mudminnow Umbra pygmaea by ethyl metanosulphanate // Ibid. -104. 1982. №1. P. 147-153.
21. Mersh J., Beauvais M.N., Nagel P. Induction of micronuclei in haemocytes and gill cells of zebra mussels. Dreissena polymorpha, exposed to clastogens. Mutation Research, 371, 1996. P. 47-55.
22. Phan Van Ngan, Vicente Gomes et al. Biomonitoring of the genotoxic potential (micronucleus and erythrocyte nuclear abnormalities assay) of the Admiralty Bay water surrounding the Brazilian Antarctic Research Station Comandante Ferraz, King George Island // Polar Biol, 2007. № 30. P. 209- 210.
23. Gregoire, M. Interphasic chromosome segregation in micronuclei followed by electron microscopy and fl uorochromes H 33342 binding to DNA / M. Gregoire, D. Hernandez-Verdun, С Masson et al. // Biol. Cell. 1982. № 2. P. 123-129.