МОДЕЛИРОВАНИЕ БИОХИМИЧЕСКИХ УСЛОВИЙ ВНУТРИОРГАННОЙ СРЕДЫ ПРИ СПИНАЛЬНОЙ МЫШЕЧНОЙ АТРОФИИ 2 ТИПА В ОРГАНОТИПИЧЕСКОЙ КУЛЬТУРЕ ТКАНИ

Моделирование биохимических условий внутриорганной среды при спинальной мышечной атрофии 2-го типа в органотипической культуре ткани выявило ингибирующий эффект сыворотки крови больных на рост нейритов эксплантатов. Установлено, что степень ингибирования роста нейритов спинальных ганглиев куриных эмбрионов коррелирует с показателями концентрации нейротрофинов (ФРГМ и ЦНТФ) в сыворотке крови больных СМА 2-го типа. Гиперэкспрессия нейротрофинов тормозит рост нейритов. Этот эффект можно рассматривать как фактор, способствующий дальнейшему процессу нейродегенерации в нервной ткани.

спинальная мышечная атрофия 2 типа, сыворотка крови, органотипическая культура ткани, фактор роста головного мозга (ФРГМ), цилиарный нейротрофический фактор (ЦНФ), каспаза-8, тамоксифен, нейрит-ингибирующий эффект, spinal muscle atrophy of type 2 (SMA), blood serum, organotypic culture, brain derived neurotrophic factor (BDNF), ciliary neurotrophic factor (CNTF), tamoxifen, caspase 8, neurite-inhibitory effect

1. Влияние оуабаина на рост нейритов чувствительных нейронов в органотипической культуре ткани / В.А. Пеннияйнен и др. // Цитология. 2003. Т. 45 (№ 5). С. 377-379.

2. Клетки / Под ред. Б. Льюин и др. М.: БИНОМ, 2010. 951с.

3. Морфологические основы патологии / Под ред. В.П. Волков. Новосибирск.: СибАК, 2015. 176 с.

4. Неврология: национальное руководство / Под ред. Е.И. Гусева. М.: ГЭОТАР-Медиа, 2009. 936 с.

5. Нейропротекция: модели, механизмы, терапия / Под ред. М. Бэра. М.: БИНОМ, 2013. 429 с.

6. Оценка реиннервационного процесса у больных спинальной мышечной атрофией 2 типа в комплексном клинико-экспериментальном исследовании / М.Г. Соколова и др. // Вестник Северо-Западного государственного медицинского университета им. И.И. Мечникова. 2014. Т. 6 (№ 4). С. 45-52.

7. Фрешни Р. Культура животных клеток: практическое руководство. М.: БИНОМ, 2010. 691 с.

8. Уилсон К., Уолкер Дж. Принципы и методы биохимии и молекулярной биологии. М.: БИНОМ, 2014. 848 с.

9. Черкасова Е.И., Брилкина А.А. Работа с культурами клеток. Нижний Новгород: Изд-во Нижегородского университета, 2015. 57 с.

10. Acute exercise modulates BDNF and pro-BDNF protein content in immune cells / A. Brunel-li et al. // Medicine and science in sports and exercise. 2012. Vol. 44 (№ 10). P. 1871-1877.

11. Ciliary neurotrophic factor is required for motoneuron sprouting / S. Siegel et al. // Exp. Neurol. 2000. Vol. 166. P. 205-212.

12. Huang E.J., Reichardt L.F. Neurotrophins: Roles in neuronal development and function // Annu. Rev. Neurosci. 2001. Vol. 24. Р. 677-736.

13. Levi-Montalchini R. The nerve growth factor: thirty-five years later (Nobel lecture, Dec. 8, 1986) // Nobel Lectures: Physiology or Medicine, 1981-1990 / Ed. Jan Lindsten. Singapore: World Scientific Publishing Co., 1993. P. 349-369.

14. Nerve growth factor, brain-derived neurotrophic factor, neurotrophin-3 and glial-derived neurotrophic factor enhance angiogenesis in a tissue-engineered in vitro model / М. Blais et al. // Tissue Engineering: Part A. 2013. Vol. 19 (Iss. 15-16). Р. 1655-1664.

15. Role of BDNF in central motor structures and motor diseases / Y.Y. He et al. // Mol. Neuro-biol. 2013. Vol. 48 (№ 3). P. 83-93.