ВЛИЯНИЕ НАНОЧАСТИЦ ОКСИДА МЕДИ (II) И ИОНА CU НА ХОЛИНЭСТЕРАЗНУЮ АКТИВНОСТЬ ГЕМОЛИМФЫ МИДИИ ГРЕЯ CRENOMYTILUS GRAYANUS (DUNKER, 1853) (BIVALVIA: MYTILIDAE) В УСЛОВИЯХ ЛАБОРАТОРНОГО ЭКСПЕРИМЕНТА
https://doi.org/ 10.18384/2310-7189-2017-3-14-26
Аннотация
Проведено исследование влияния содержания наночастиц оксида меди (НЧ CuO) и ионов Cu2+ в среде, на их накопление в гемолимфе мидии Crenomytilus grayanus. Оценено влияние наночастиц оксида меди и ионной формы металла (Cu2+) на активность холинэстеразы в гемолимфе мидии. Показано разнонаправленное воздействие наночастиц CuO и иона Cu2+ на содержание меди и активность холинэстеразы в гемолимфе мидии. На начальном этапе эксперимента в случае ионной формы меди холинэстеразная активность снижалась, в случае наночастиц меди активность увеличивалась. На завершающей стадии эксперимента наблюдалась обратная зависимость для рассмотренных форм меди.
Об авторах
Николай Николаевич Ковалев
Дальневосточный государственный технический рыбохозяйственный университет
Россия
Россия
Евгений Валерьевич Михеев
Дальневосточный государственный технический рыбохозяйственный университет
Россия
Россия
Виктор Яковлевич Кавун
Национальный научный центр морской биологии ДВО РАН
Россия
Россия
Список литературы
1. Кавун В.Я., Шулькин В.М. Изменение микроэлементного состава органов и тканей двустворчатого моллюска Crenomytilus grayanus при акклиматизации в биотопе, хронически загрязненном тяжелыми металлами // Биология моря. 2005. Т. 31. № 2. С. 123-128.
2. Ковалев Н.Н. Адаптивная роль холинэстеразы гемолимфы двустворчатых моллюсков // Известия ТИНРО. 2003. Т. 133. С. 97-103.
3. Ковалев Н.Н., Кавун В.Я., Костецкий Э.Я., Михеев Е.В., Подгурская О.В. Холинэстеразная активность гемолимфы мидии Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) (Bivalvia: Mytilidae), обитающей в импактных природных и антропогенных условиях // Биология. моря. 2016. Т. 42. № 1. С. 41-47.
4. Подгурская О.В., Кавун В.Я. Оценка адаптационно-защитного потенциала двустворчатых моллюсков Modiolus modiolus (Linnaeus, 1758) и Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) в условиях повышенного содержания тяжелых металлов в среде // Биология. моря. 2012. Т. 38. № 2. С. 174-182.
5. Фадеева Ю.И., Слободскова В.В., Кавун В.Я., Челомин В.П. Влияние наночастиц оксида меди (II) и иона Cu на образование продуктов перекисного окисления липидов в жабрах мидии Грея Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) (Bivalvia: Mytilidae) в условиях лабораторного эксперимента // Вестник Московского государственного областного университета. Серия: Естественные науки. 2016. № 3. С. 74-83.
6. Фадеева Ю.И., Кавун В.Я., Слободскова В.В., Челомин В.П. Влияние оксида меди (II) и иона Cu на изменение микроэлементного состава органов мидии Грея Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) (Bivalvia: Mytilidae) в условиях лабораторного и натурного экспериментов // Вестник Московского государственного областного университета.Серия: Естественные науки. 2016. № 3. С. 84-97.
7. Amelia M., Lincheneau C., Silvi S., Credi A. Electrochemical properties of CdSe and CdTe quantum dots // Chem. Soc. Rev. 2012.Vol. 41, no 17. P. 5728-5743.
8. Belcheva N.N., Zakhartsev M.V., Dovzhenko N.V., Zhukovskaya A.F., Kavun V.Ya., Chelomin V.P. Anthropogenic pollution stimulates oxidative stress in soft tissues of mussel Crenomytilus grayanus (Dunker, 1853) // Ocean Sci. J. 2011. Vol. 46, no 2. Р. 85-94.
9. Canesi L., Ciacci C., Fabbri R. [еt. al]. Bivalve mollusks as a unique target group for nanotoxity // Mar. Environ. Res. 2012. Vol. 76. P. 16-21.
10. Chang Y.N., Zhang M., Lin X., Zhang J., Gengmei X. The Toxic Effects and Mechanisms of CuO and ZnO Nanoparticles // Materials. 2012. Vol. 5. P. 2850-2871.
11. Ellman G.L., Courtney K.D., Andres V. Jr., Featherstone R.M. A new and rapid colorimetric determination of acetylcholinesterase activity // Biochem. Pharmacol. 1961. Vol. 7, no 1. Р. 88-95.
12. Federici G., Shaw B.J., Handy R.D. Toxicity of titanium dioxide nanoparticles rainbow trout (Oncorhynchus mykiss): Gill injury, oxidative stress, and other physiological effects // Aquat. Toxicol. 2007. Vol. 87. P. 415-430.
13. Gomes T., Pinheiro J.P., Cancio I. et al. Effects of copper nanoparticles exposure in the mussel Mytilus galloprovincialis // Environ. Sci. Technol. 2011. Vol. 45, no. 21. P. 9356-9362.
14. Gorbi S., Lamberti C.V., Notti A. et al. An ecotoxicological protocol with caget mussels, Mytilus galloprovincialis, for monitoring the impact of an offshore platform in the Adriatic Sea // Mar. Environ. Res. 2008. Vol. 65, no. 1. P. 34-49.
15. Joh D.Y.; Kinder J.; Herman L.H.; Ju S.Y.; Segal M.A.; Johnson J.N.; Chan G. K.L.; Park J. Single-walled carbon nanotubes as excitonic optical wires // Nat. Nanotechol. 2011. Vol. 6. P. 51-56.
16. Kopecka-Pilarczyk J., In vitro effects of pesticides and metals on the activity of acetylcholinesterase (AChE) from different tissues of the blue mussel, Mytilus trossulus L. // Journal of Environmental Science and Health. Part B. 2010. Vol. 45. P. 46-56.
17. Laurent S.; Forge D.; Port M.; Roch A.; Robic C.; van der Elst L.; Muller R.N. Magnetic iron oxide nanoparticles: synthesis, stabilization, vectorization, physicochemical characterizations, and biological applications // Chem. Rev. 2008. Vol. 108. P. 2064-2110.
18. Lopez, J.L. Role of proteomics in taxonomy: the Mytilus complex as a model of study // J.Chromatogr. 2005. Vol. 815. P. 261-274.
19. Lowry O., Rosenbrougt N., Parr A., Randall R. Protein measurement with the Folinphenol reagent // J. Biol. Chem. 1951. Vol. 193, no 1. P. 265-276.
20. Moore M.N. Do nanoparticles present ecotoxiclological risks for the health of the aquatic environment? // Environ. Int. 2006. Vol. 32. P. 967-976.
21. Nations S., Wages M., Canas J.E., Maul J., Theodorakis C., Cobb G.P. Acute effects of Fe2O3, TiO2, ZnO and CuO nanomaterials on Xenopus laevis // Chemosphere.2011. Vol. 83. P. 1053-1061.
22. Shulkin V.M., Presley B.J., Kavun V.Ya. Metal concentration in mussel Crenomytilus grayanus and oyster Crassostera gigas in relation to contamination of ambient sediments // Environ. Int. 2003. Vol. 29, no. 4. P. 493-502.
23. Tang F., Li L., Chen D. Mesoporous silica nanoparticles: Synthesis, biocompatibility and drug delivery // Adv. Mater. 2012. Vol. 24. P. 1504-1534.
24. Thompson E.L.,Taylor D.A., Nair S.V., Birch G., Haynes P.A., Raftos D.A. Proteomic discovery of biomarkers of metal contamination in Sydney Rock oysters (Saccostrea glomerata) // Aquat. Toxicol. 2012. Vol. 109. P. 202-212.
25. Tsangaris C., Kormas K., Strogyloudi E. [et al]. Multiple biomarkers of pollution effects in caged mussels on the Greek coastline // Comp. Biochem. Physiol. C: Toxicol. Pharmacol. 2010. Vol. 151, no. 3. P. 369-378.
26. Yan L., Zheng Y.B., Zhao F., Li S., Gao X., Xu B., Weiss P.S., Zhao Y. Chemistry and physics of a single atomic layer: Strategies and challenges for functionalization of graphene and graphene-based materials // Chem. Soc. Rev. 2012. Vol. 41. P. 97-114.
27. Wang Z., Li N., Zhao J. [еt. al]. CuO Nanoparticles Interaction with Human Epithelial Cells: Cellular Uptake, Location, Export, and Genotoxicology // Chem. Res. Toxicol. 2012. Vol. 25. P. 1512-1521.
Рецензия
Просмотров:
68
Послать статью по эл. почте 