IN VITRO РЕГЕНЕРАЦИЯ РАСТЕНИЙ ЧЕСНОКА ОЗИМОГО (ALLIUM SATIVUM L.) ИЗ ВОЗДУШНЫХ ЛУКОВИЧЕК

Статья посвящена вопросу получения оздоровленного посадочного материала чеснока озимого in vitro из воздушных луковичек. В статье проведен анализ влияния возраста соцветия сортов чеснока озимого, гормонального состава питательной среды MS на морфогенез воздушных луковичек чеснока в культуре in vitro. Установлено, что использование воздушных луковичек для введения чеснока озимого в культуру in vitro, изолированных из нераскрывшихся соцветий диаметром до 25 мм, позволяет получить свободные от внутренней инфекции растения. Доказано, что культивирование воздушных луковичек на среде MS, содержащей БА в концентрации 2 мг/л и НУК - 1 мг/л, сопровождается образованием проростков, а затем - растений, в основании которых формируются луковички. Адаптация таких растений к условиям ex vitro сопровождается получением однозубковых луковиц, из которых в условиях открытого грунта образуются многозубковые луковицы.3

чеснок озимый, регулятор роста, регенерант, адаптация, оздоровление посадочного материала

1. Белик В.Ф. Методика опытного дела в овощеводстве и бахчеводстве. М.: Агропромиздат, 1992. 320 с.

2. Берговина И.Г. Оценка исходного материала озимого чеснока для создания сортов, обладающих комплексом хозяйственно ценных признаков: автореф. дис.. канд. с.-х. наук. Горки, 2012. 21 с.

3. Бутенко Р.Г. Биология клеток высших растений in vitro и биотехнологии на их основе. М.: ФБК-ПРЕСС, 1999. 160 с.

4. Бутенко Р.Г. Культура изолированных растительных тканей и физиология морфогенеза растений. М.: Наука, 1964. 270 с.

5. Голубкина Н.А., Пименова В.В., Кошелева О.В. Некоторые биохимические показатели Allium sativum L. // Гавриш. 2008. № 1. С. 37-39.

6. Деменко В.И. Микроклональное размножение садовых растений: учебное пособие. М.: МСХА, 2007. 55 с.

7. Доспехов Б.А. Методика полевого опыта. М.: Колос, 1985. 416 с.

8. Ивченко Т.В., Виценя Т.И. Усовершенствование технологии клонального микроразмножения чеснока в культуре in vitro // Науковi працi Пiвденного фiл. “Кримський агротехнологический университет” Нацiонального аграрного унiверситету. 2009. Вип. 127. С. 191-194.

9. Кокарека Н.Н., Плешакова Т.И. Вирусы лука и чеснока: диагностика и профилактика // Картофель и овощи. 2013. № 6. С. 13-14.

10. Комиссаров В.А. Об эволюции культурного чеснока A.sativum L.// Известия ТСХА. 1964. Вып. 4. С. 70-73.

11. Кузнецов А.В. Чеснок. М.: Сельхозиздат, 1954. 117 с.

12. Литвинов С.С. Методика полевого опыта в овощеводстве. М.: ГНУ ВНИИО, 2011. 650 с.

13. Марьяхина И.Я. Получение безвирусного посадочного материала чеснока, лука-шалота и многоярусного лука с использованием биотехнологических приемов: метод. рекомендации. М.: ВАСХНИИЛ, 1987. 45 с.

14. Налобова B.Л., Купреенко Н.П., Войтехович И.М., Корецкий В.В. Анализ сортообразцов лука репчатого и чеснока озимого на наличие вирусной инфекции // Сборник научных трудов Института овощеводства (Минск). 2013. Т. 21. С. 142-147.

15. Никонович Т.В., Берговина И.Г., Скорина В.В. Оздоровление растений-регенерантов озимого чеснока в условиях культуры in vitro при помощи Рибавирина // Вестник Белорусской государственной сельскохозяйственной академии. 2011. № 4. С. 77-81

16. Пивоваров В.Ф., Ершов И.И., Агафонов А.Ф. Луковые культуры. М.: ВНИИССОК, 2001. 500 с.

17. Поляков А.В. Важнейшие вопросы развития чесноководства в России // Экологические проблемы современного овощеводства и качество овощной продукции. М.: ФГБНУ ВНИИО, 2014. С. 436-442.

18. Поляков А.В. Получение регенерантов овощных культур и их размножение in vitro: методические рекомендации. М.: ГНУ ВНИИО Россельхозакадемии, 2005. 36 с.

19. Поляков А.В., Зубалий А.В., Линник Т.А. Морфогенез чеснока (Allium sativum L.) in vitro // Материалы III Междунар. научной конф. «Качество и экологическая безопасность пищевых продуктов и производств», 25-29 марта 2015. Тверь: ТГУ, 2015. С. 154-157.

20. Тюкавин Г.Б. Получение безвирусных растений чеснока in vitro // Селекция овощных культур: сборник научных трудов. М.: ВНИИССОК, 1989. С. 116-119.

21. Шевелуха В.С., Воронин Е.С., Калашникова Е.А., Ковалев В.М., Ковалев А.А., Кочиева Е.З. Сельскохозяйственная биотехнология / 3-е изд., перераб. и доп. М.: Высшая школа, 2008. 710 с.

22. Ebi M., Kasai N., Masuda K. Small inflorescence bulbils are best for micropropagation and virus elimination in garlic// J. Hort. Sci., 2000. Vol. 35. P. 735-737.

23. Haque M.A. Effect of 2.4-D and BAP on in vitro Regeneration of Garlic // OnLine Journal of Biological Sciences. 2003. №2 (12). P. 771-774.

24. Hassan M.N., Haque M.S., Hassan M.M. An efficient protocol for somatic embryogenesis of garlic (Allium sativum L.) using root tip as explants // J. Bangladesh agril. univ. 2014 № 12(1). P. 1-6.

25. Kim S.S., Guo D.P., Jung D.C. Multiple Shoots Regeneration and in vitro Bulblet Formation from Garlic Callus// J. Plant Biotechnology. 2003. №5 (2). P. 95-99.

26. Mujica H., Sanabria M.E., Mogollуn N. Formaciуn in vitro del bulbo del ajo morado (Allium sativum L.)// In vitro formation of purple garlic (Allium sativum L.) bulb // Rev. Fac. Agron., 2008. Vol. 25.P. 197-210.

27. Murashige T., Skoog F. A revised medium for rapid growth and bioassays with tobacco tissue cultures // Physiol. Plant., 1962. Vol.15. №13. P. 473-497.

28. Salam A.M., Ali M.R., Alam K.A. Callus Induction and Regeneration of Indigenous Garlic (Allium sativum L.) // American Journal of Plant Physiology. 2008. №3 (1). P. 33-39.

29. Zel J. The effect of jasmonic acid, sucrose and darkness on garlic (Allium sativum L. cv. ‘Ptujski’ Jesenski) bulb formation in vitro // Cellular & Developmental Biology Plant, 1997, Vol. 33. P. 231-235.