ПРИМЕНЕНИЕ СОВРЕМЕННЫХ СРЕДСТВ СТЕРИЛИЗАЦИИ ДЛЯ ВВЕДЕНИЯ В КУЛЬТУРУ IN VITRО ЧЕСНОКА (ALLIUM SATIVUM L.)

Цель. Исследование эффективности различных дезинфицирующих препаратов для стерилизации растительного материала чеснока при введении в культуру in vitro. Процедура и методы. Стерилизацию растительного материала проводили по двухступенчатой схеме. Были использованы хлорсодержащие и четвертичные аммонийные соединения, водорастворимые гранулы «Главхлор», концентрированные жидкие препараты «Део-бактер» и «Мегацид». Препараты применяли в концетрации от 1 до 3% по действующему веществу и экспозиии 20 минут. Результаты. Исследования показали, что препарат «Главхлор» при стерилизации растительного материала чеснока позволяет получить до 90% свободных от инфекции эксплантов, а препарат «Мегацид» позволяет снизить уровень контаминации на 7-29%. Использование препарата «Део-бактер» оказалось малоэффективным. Теоретическая и/или практическая значимость. Доказано, что препарат «Главхлор» можно использовать в качестве альтернативного средства для стерилизации растительного материала при введении в культуру in vitro.

чеснок, воздушная луковичка, эксплант, стерилизация, донце

1. Методология биотехнологических исследований цветочно-декоративных культур / под ред. И. В. Митрофановой. Симферополь: Ариал, 2018. 265 с.

2. Поляков А. В., Азопкова М. А., Муравьёва И. В. Получение in vitro посадочного материала чеснока озимого (Allium sativum L.) : Методическое руководство. М.: Всероссийский научно-исследовательский институт овощеводства - филиал федерального государственного бюджетного научного учреждения Федеральный научный центр овощеводства, 2018. 12 с.

3. Поляков А. В. Получение регенерантов овощных культур и их размножение in vitro // Методические рекомендации. М.: Всероссийский научно-исследовательский институт овощеводства Российской сельскохозяйственной академии. 2005. 36 с.

4. Прошлое, настоящее и будущее четвертичных аммонийных соединений. Дезинфектология на современном этапе / Опарин П. С., Тюрнева Н. А., Шептунов С. И., Опарина Т. П., Антонива Т. А., Панова М. А. Иркутск: Восточно-Сибирский научный центр Сибирского отделения Российской академии медицинских наук, 2003. 15 с.

5. Саттон Д., Фотeргилл А., Ринальди М. Определитель патогенных и условно патогенных грибов. М.: Мир, 2001. 464 с.

6. Ashwini P. Benke, Punam Shelke, V. Mahajan. Three step protocol for regeneration of plantlets in INDIAN Garlic varieties using root meristem. In: Indian Journal Of Agricultural Research, 2018, vol. 52(1), pp. 66-70.

7. Gull I. Comparative effect of different pyhtohormones on the micropropagation of Allium sativum. In: Pak. J. Biochem. Mol. Biol, 2014, vol. 47(1-2), pp. 121-124.

8. Metwally E. I. In vitro propagation of garlic (Allium sativum L.) trough adventitioses shoot organogenesis. In: African Jornal of Biotechnolog, 2014, vol. 13, no. 38, pp. 3892-3900.

9. Scotton D. S., Benedito V. A., Molfetta J. B., Rodrigues B. I. Fp., Tulmann-Neto A., Figueira A. Response of root explants to in vitro cultivation of marketable garlic cultivars. In: Horticultura Brasiliera, 2013, vol. 31, no. 1, pp. 80-85.

10. Tomaszewska-Sowa M., Figas A., Keutgen N., Keutgen A. J. Establishing an efficient explant superficial sterilization protocol for in vitro micropropagation of bear’s garlic (Allium ursinum L.). In: Herba Polonica, 2015, vol. 61(4), pp. 66-77.